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本试剂盒采用独特的脱腐缓冲液系统，可以将土壤样本中的腐植酸尽可能的去除，并且配有的玻璃珠可有效破碎土壤样本中的各种复杂成分，保证从土壤中提取基因组DNA的完整性。使用本试剂盒回收的DNA杂质少，完整性好，可直接用于PCR、酶切等分子生物学下游实验。

• 适用范围广：适用于花坛土、花盆土、农田土、山林土、淤泥、红土、黑土、粉尘等多类土壤环境样本的提取。
  
• 操作便捷：能够集中在相对较短时间内完成实验操作。
  
• DNA高纯度：与磁珠法纯化相结合，提取的DNA纯度高，可直接用于下游实验。

• 新采取的样本会得到更高的得率，不同样本在采样前应先查阅相应的最佳保存条件。
  
• 在需要吸取上清液的步骤中应避免吸到沉淀，否则会影响产物纯度。
  
• 缓冲液GFA、去蛋白液RD和漂洗液PWD使用前请参照瓶上标签加入相应的醇。
  
• 过量的DNA可能抑制下游PCR反应，遇到这种情况建议将DNA模板进行稀释后使用。
  
• 使用前检查缓冲液SC是否有沉淀，若有沉淀，请在37℃加热至完全溶解后使用。

• 样本处理
  在2mL离心管中加入样本0.25～0.5g，加入500μL缓冲液SA、100μL缓冲液SC和0.25g研磨珠，涡旋振荡15min至样本混匀。12000rpm （~13400×g)离心1min，转移上清液（约500μL）至新的2mL离心管。
  
  • 针对一些得率低或需提取真菌基因组的样本，建议涡旋震荡混匀或组织匀质仪震荡混匀后70℃加热裂解15min以提高裂解效率。
• 加入200μL缓冲液SH混匀，涡旋5sec，4℃放置10min。
  
• 12000rpm （~13400×g)离心3min，转移上清液至新的2mL离心管，加入500μL缓冲液GFA（使用前请先检查是否已加入异丙醇），颠倒混匀。
  
  • 转移上清时不要移走沉淀，否则可能降低DNA纯度。
• 加入10μL磁珠悬浮液G，振荡混匀5min。
  
  • 为了确保磁珠彻底重悬，请在使用前振荡混匀。
• 将离心管放置于磁力架上静置30sec，磁珠完全吸附后，小心吸去液体。
  
• 将离心管从磁力架上取下，加入700μL去蛋白液RD（使用前请先检查是否已加入无水乙醇），振荡混匀5min。
  
• 将离心管放置于磁力架上静置30sec，磁珠完全吸附后，小心吸去液体。
  
• 将离心管从磁力架上取下，加入700μL漂洗液PWD（使用前请先检查是否已加入无水乙醇），振荡混匀3min。
  
• 将离心管放置于磁力架上静置30sec，磁珠完全吸附后，小心吸去液体。
  
• 重复步骤8和9一次。
  
• 将离心管于磁力架上，室温晾干5～10min。
  
  • 乙醇残留会抑制后续的酶反应，所以晾干时要确保乙醇挥发干净。但也不要干燥太长时间，以免难以洗脱DNA。
• 将离心管从磁力架上取下，加入50～100μL洗脱缓冲液TB，振荡混匀，置于56℃，孵育5min，期间震荡混匀3回，每回3～5次。
  
• 将离心管放置于磁力架上静置2min，磁珠完全吸附后，小心将DNA溶液转移至一个新离心管中，并于适当条件保存。